細胞培養是生物醫藥科研工作者要掌握的基本技能，也是決定實驗成敗的關鍵環節。因此，了解細胞培養基本操作要領對于生物醫藥科研工作者，尤其是從事基礎研究的科研人員尤為重要。本文將從實際操作角度談談體外細胞培養過程中的操作要領。

　　從臍帶華通氏膠組織分離培養的原代細胞

　　1.實驗前準備

　　正常細胞生長環境為5%二氧化碳，恒溫37℃以及飽和濕度。開始進行細胞培養前，實驗者要查閱資料，了解所要培養細胞的生長習慣，如貼壁、半貼壁、懸浮等。了解細胞生長的營養條件，大部分細胞是10%胎牛血清+89%培養基+1%抗生素。當然，培養基細分有很多種類，如高糖、低糖、分化培養基、干細胞培養基等。根據培養細胞的生長條件，預先選擇合適的耗材，如促貼壁或低吸附培養瓶、培養皿、培養板等。在處理細胞前，算好本次處理所需的細胞生長培養基總量，生長培養基現配現用。

　　2.細胞消化

　　對于貼壁類細胞，傳代相較于懸浮細胞操作步驟多，應避免不必要的細胞污染發生。細胞生長匯合度80-90%左右時即可進行傳代操作。因為細胞生長有濃度依賴性，過完或過早傳代都會影響細胞狀態。培養箱取出細胞，PBS清洗2遍。這時要將細胞培養瓶中的液體吸凈，可以用真空泵、移液管、一次性吸管等，但是無論用什么方式吸凈，都要避免操作手觸碰瓶口而造成污染，避免吸頭觸碰細胞面而對細胞造成機械損傷。吸凈液體后，加入適量的胰蛋白酶。胰蛋白酶不宜過多，只需幾滴，傾斜培養瓶后能將細胞面覆蓋即可。此時可將細胞放在培養箱中，37℃的條件有助于胰蛋白酶發揮消化作用。消化時間在2分鐘左右即可。當然有的細胞較容易消化，可能消化過程只需30秒，如TC-1、MC-38等腫瘤細胞株；有的細胞消化較慢，如原代培養的間充質干細胞(MSCs)。另外，如何判斷細胞消化過程是否結束？我們可以在倒置顯微鏡下觀察細胞形態，細胞大部分從多角形變為卵圓形，并見細胞漂浮。也可以通過肉眼直接觀察細胞面由光滑向毛玻璃狀變化。這是可以加入適量完全培養基終止胰蛋白酶消化，基本上加入3-5毫升即可。加入后輕輕吹吸后轉移到離心管進行離心，基本上1000轉離心3分鐘細胞就能分離下來，轉速不宜過高，否則會有細胞碎片跟著離心下來。離心結束后，棄上清液。這時可以直接倒，然后用移液槍把殘留液體洗凈。

　　3.接種

　　將以上得到的細胞沉淀重懸。可以借助漩渦震蕩儀來重懸，也可以在重懸細胞前手指輕彈離心管底部，再加入適量培養基重懸，切忌直接加入培養基后用移液槍去吹打。重懸好的細胞均分到2-3個培養瓶中，補全生長培養基繼續培養。T25瓶培養液總量8-10毫升左右，T75瓶培養液總量20-25毫升左右。接種后，十字混勻，并每天鏡下觀察細胞狀態。細胞細胞傳代比例是可以根據細胞生長規律調整的，如生長較快的腫瘤細胞株，可以按照1：5，甚至1：10的比例傳代。當然原代分離培養的細胞生長較慢，可以1：2，甚至2：3傳代。