第1步：

 

必須在預實驗中確定細胞系的正確接種濃度。根據您的細胞類型，用4-6x10 4細胞/ ml在2-3天內產生匯合的單層。

1.打開孔可移除腔室載玻片（ibidi，80841）包裝，在無菌條件下。

2.像往常一樣用胰蛋白酶消化并計數細胞。細胞濃度為5×104細胞/ ml MCF-7。

3. 將400微升細胞懸浮液加入腔室的每個孔中。避免搖晃，因為這會導致細胞分布不均勻。

4. 用配套的蓋子蓋住。在37°C和5％CO2下培養。細胞至少培養24小時，或直到建立融合的單層。

第2步：

 

固定是染色程序的第一步。目標是將細胞，細胞形成物或組織維持在其當前狀態，并在較長時間內通過化學試劑保存。

1.小心地吸出細胞培養基。

2.用PBS洗兩次。

3.加入400μl福爾馬林溶液。

4.在室溫下孵育30分鐘。

5.小心吸入福爾馬林溶液。

6.用PBS洗滌三次。

第3步：

 

應根據感興趣的細胞結構選擇染色試劑。在該方案中使用DAPI和DYE-490鬼筆環肽染色MCF-7細胞的細胞核和肌動蛋白骨架。

1.準備你的染色溶液：

· 聚苯硫醚

· DYE-490鬼筆環肽

· DAPI 1µg/ml

2.小心吸出PBS。

3.移取400μl染色溶液到每個孔中

4.在室溫下避光孵育30分鐘

第4步：

  

在染色后清洗你的樣本會使背景信號降到最低   

1.小心地吸出染色溶液   

2.加入400μl緩沖液     

3.小心吸入緩沖液   

4.重復步驟2和步驟3一次

第5步：

從一個邊部開始，用手或用鑷子小心地取下硅膠墊圈。該步驟應以緩慢，穩定的進行，以避免損壞細胞層。

第6步：

完成染色程序后，必須在用顯微鏡成像之前封固樣品。該步驟還防止樣品脫水。

1.將載玻片側面在干凈的實驗室濕巾上輕敲，從樣品中去除多余的介質。

2.將封固劑涂在樣品上。用24毫米x 60毫米的蓋玻片覆蓋安裝的樣品，小心地將蓋玻片放到安裝介質上，以避免夾住任何氣泡。

第7步：顯微觀察

在可移除 8 孔腔室中免疫染色的 MCF-7 細胞的熒光顯微鏡檢查。綠色：α-微管蛋白，紅色：F-肌動蛋白（鬼筆環肽），藍色：細胞核 (DAPI)。寬場熒光圖像是用 20 倍物鏡拍攝的。

免疫熒光實驗實例

人眼的小梁網細胞，在 ibidi 8 Well Chamber 上培養，可移除。F-肌動蛋白絲顯示為綠色；細胞核被 DAPI（藍色）染色。圖片由中國香港香港理工大學視光學院的 Samantha Shan 提供。

 

 

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