Make it EVIDENT
本期推出【FV3000 Makes Yeast Evident】
東南大學電子科學與工程學院 MEMS教育部重點實驗室
釀酒酵母與復制壽命檢測
B 酵母細胞復制壽命示意圖[2]
酵母細胞復制壽命的傳統測量手段是基于1959年提出的微解剖法,即利用微解剖針手動剔除培養板上單個酵母細胞產生的每代子細胞,從而得到復制壽命。該方法具有效率低、周期長、樣本量小、對細胞易造成損傷等缺點。
而微流控芯片可利用微結構實現酵母單細胞的捕獲,利用流體力剪切去除子細胞,為釀酒酵母自動化高通量單細胞培養和高時空分辨率監測提供可能,但有如下局限:
現有微流控芯片在細胞捕獲穩定性、子細胞剪切效率、復制壽命檢測精確性等方面都有待于提高;
顯微成像技術在課題研究中的作用
該論文研制的高通量釀酒酵母單細胞捕獲-培養-解剖微流控芯片,與奧林巴斯FV3000激光掃描共聚焦顯微鏡雙劍合璧,成功實現對雙倍體釀酒酵母母細胞的可靠捕獲和子細胞的一致性剪切,進而實現穩定的長期培養和完整的復制壽命檢測研究。
針對不同“瓶身”長度,時序圖像顯示在母細胞較小時,捕獲結構容易捕獲上游剪切下的細胞。而母細胞接近凋亡時,由于體積增大,子細胞旋轉至“瓶頸”的成功率降低,朝向“瓶身”上游生長的子細胞會將母細胞拖拽造成樣本丟失。根據統計的母細胞穩定保持的比例,最終確定“瓶身”長度優化值。
A 4小時內微捕獲陣列中的空結構實現“自填充”
B 4小時內單細胞捕獲效率提升
C 較短“瓶身”的捕獲結構,朝向上游的子細胞將母細胞拖拽造成樣本丟失
D 較長“瓶身”的捕獲結構,易捕獲上游剪切下的細胞
接下來,研究人員在高通量單細胞長時間培養過程中,通過視頻拍攝觀測并驗證了母細胞在初始出芽時的動態旋轉,并在芽稍大時重新定向至“瓶頸”處,且停止旋轉直到胞質分裂完成后被解剖分離。通過時序成像,驗證了母細胞在多代子細胞之間,面臨隨機的出芽位點依然能夠實現穩定的“瓶頸”定向和子細胞剪切。
同時,釀酒酵母的細胞周期在其壽命內的分布也呈現一定規律。細胞在完成第一個細胞周期的用時比接下來5代用時略長,而接下來的復制壽命里,各代周期皆相對平穩,只在臨近死亡的最后幾代中急劇上升。選取樣本并將其每個細胞周期使用不同顏色的長條標出,從而將細胞群體間的異步化結果變得可視化。
結果表明,細胞在前8至10代以內,細胞周期在細胞相互間保持有相對的同步性,隨著細胞不斷衰老,細胞間的異質化現象逐漸明顯。臨近細胞死亡時,細胞的周期被拉長,且細胞間差異逐漸擴大。
A 雙倍體釀酒酵母細胞的復制壽命曲線
B 不同時間點下,母細胞所產生的子細胞被空捕獲結構捕獲后的復制壽命
C 釀酒酵母細胞的平均細胞周期(出生對齊)
D 釀酒酵母細胞的平均細胞周期(死亡對齊)
E 細胞周期分布圖
該研究后續工作包括利用卷積神經網絡深度學習算法實現酵母細胞的復制壽命、細胞周期、生長速率等關鍵生理指征參數的高效智能分析,成功解決酵母細胞衰老過程中的表型分析問題,為釀酒酵母復制壽命及其衰老相關形態變化完整關聯性圖譜的構建提供可能,并在雜合性缺失、沉默信息調控等雙倍體細胞獨有的壽命調控模式研究上具有廣泛的前景。
在成像樣品制備以及圖像采集中的注意事項
參考文獻
[1] Smith, J., Wright, J., & Schneider, B. L. (2015). A budding yeast's perspective on aging: The shape I'm in. Exp Biol Med, 240(6), 701-710.
[2] Lee, S. S., Vizcarra, I. A., Huberts, D. H. E. W., Lee, L. P., & Heinemann, M. (2012). Whole lifespan microscopic observation of budding yeast aging through a microfluidic dissection platform. Proc Natl Acad Sci USA, 109(13), 4916-4920.