摘要
研究旨在構建高效表達人卵泡抑素（hFS）的重組巴斯德畢赤酵母工程菌。通過基因合成、質粒構建及電穿孔轉化技術，將hFS基因整合至酵母基因組中，篩選高拷貝轉化子并優化表達條件。采用某試劑進行蛋白純化及Western blot驗證，最終獲得可溶性hFS蛋白。實驗表明，工程菌在甲醇誘導下可實現hFS高效表達，為后續規模化生產奠定基礎。

引言
人卵泡抑素（hFS）是一種糖蛋白激素，在生殖調控、細胞分化及代謝疾病治療中具有重要應用價值。傳統哺乳動物細胞表達系統成本高且效率低，而巴斯德畢赤酵母（Pichia pastoris）憑借其強啟動子、高分泌效率及易于高密度發酵等優勢，成為重組蛋白表達的理想宿主。目前，hFS在酵母系統中的表達仍面臨基因整合效率低、翻譯后修飾差異等問題。
研究通過優化基因合成與質粒設計，利用威尼德電穿孔儀提高轉化效率，結合多拷貝篩選策略，構建高效表達hFS的工程菌株。同時系統優化誘導條件，提升目標蛋白產量與活性，為hFS的工業化生產提供技術支持。

實驗部分
1. 材料與方法
1.1 菌株與質粒
宿主菌：巴斯德畢赤酵母GS115（His-表型）。
表達載體：pPIC9K，含AOX1強啟動子及α-factor信號肽序列。
1.2 培養基與試劑
YPD培養基：酵母提取物10 g/L，蛋白胨20 g/L，葡萄糖20 g/L。
BMGY/BMMY培養基：用于酵母預培養及甲醇誘導表達。
某試劑限制性內切酶、連接酶及DNA純化試劑。
某試劑His標簽純化柱及Western blot檢測試劑。
1.3 hFS基因合成與質粒構建
根據GenBank中hFS基因序列（登錄號：NM_001465），優化密碼子以適應酵母偏好性，化學合成全基因序列。
采用某試劑限制性內切酶EcoR I和Not I雙酶切pPIC9K載體，與hFS基因片段連接，構建重組質粒pPIC9K-hFS。
通過威尼德分子雜交儀驗證質粒完整性，并測序確認。
1.4 電穿孔轉化與多拷貝篩選
將線性化質粒pPIC9K-hFS（經Sal I酶切）通過威尼德電穿孔儀導入GS115感受態細胞，參數設置為：電壓1500 V，脈沖時間5 ms。
轉化液涂布MD平板（1.34% YNB，4×10^-5%生物素，1%葡萄糖），30℃培養3天。
高拷貝轉化子篩選：依次使用含0.5、1.0、2.0 mg/mL某試劑G418的YPD平板梯度篩選，挑取抗性最強菌株。
1.5 表達條件優化
初篩菌株接種至BMGY培養基（30℃、250 rpm），OD600達6時轉至BMMY培養基（含0.5%甲醇），每24 h補加甲醇至終濃度1%。
優化參數：誘導溫度（20℃、25℃、30℃）、初始pH（5.0、6.0、7.0）、甲醇補加濃度（0.5%、1.0%、1.5%）。
離心收集上清，某試劑BCA法測定蛋白濃度。
1.6 蛋白純化與鑒定
上清液經0.22 μm濾膜過濾后，加載至某試劑Ni-NTA親和層析柱，洗脫液含250 mM咪唑。
SDS-PAGE及Western blot檢測：使用某試劑抗hFS單克隆抗體（1:2000稀釋），威尼德紫外交聯儀進行膜轉印。

結果與討論
2.1 重組質粒構建與轉化驗證
酶切及測序結果表明，hFS基因正確插入pPIC9K載體。
威尼德原位雜交儀檢測顯示，高拷貝菌株基因組中整合3-5個hFS表達盒。
2.2 表達條件優化結果
最適誘導溫度為25℃，初始pH 6.0，甲醇濃度1.0%。
在此條件下，hFS表達量達120 mg/L，較未優化組提高2.3倍。
2.3 蛋白純化與活性分析
Ni-NTA純化后獲得單一目的條帶（約35 kDa），純度>90%。
Western blot顯示特異性結合信號，證實為完整hFS蛋白。

討論
研究通過優化基因整合策略與誘導條件，顯著提升了hFS在畢赤酵母中的表達效率。威尼德電穿孔儀的高轉化效率（>10^5 CFU/μg DNA）對多拷貝菌株篩選至關重要。此外，低溫誘導（25℃）可能通過減緩蛋白折疊壓力，提高可溶性表達比例。后續研究需進一步驗證hFS的糖基化修飾及生物活性。

結論
成功構建高效表達人卵泡抑素的重組巴斯德畢赤酵母工程菌，優化后蛋白產量達120 mg/L，純度符合應用要求。本實驗為hFS的規�；�生產及功能研究提供了可靠技術平臺。

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