干細胞被認為是可用于建模和修復細胞功能的最強大和最靈活的細胞類型。目前干細胞被廣泛用于藥物篩選、細胞治療、疾病建模、毒理學和基因組編輯研究，可以說幾乎用于任何基礎和轉化研究領域。重要的是，其中許多技術依賴于將基因和/或蛋白質成功引入干細胞，例如CRISPR/Cas9基因編輯。然而，干細胞，特別是多能干細胞（即能夠產生任何體細胞類型的細胞）特別難以轉染。轉染干細胞時最大的挑戰是細胞死亡，這在非病毒和病毒轉染遞送方法之后都有報道。此外，由于對細胞死亡的易感性和快速自我更新，干細胞的轉染效率可能低于其他細胞類型。

為了利用基于化學轉染進行基因操作的優勢，理想的試劑需要實現高轉染效率（在干細胞高于50%的情況下），同時最大限度地減少常見的干細胞細胞活力問題。

在此，本文報道了基于化學轉染的轉染試劑jetOPTIMUS®在三種難轉染的干細胞中的轉染效率的表現：間充質干細胞（hMSCs）、小鼠胚胎干細胞（mESCs）和人類誘導多功能干細胞(hiPSCs)。JetOPTIMUS®基于陽離子聚合物，在各種原代細胞中達到DNA的高轉染效率，同時對細胞活率和形態的影響最小。此外，還評估了jetOPTIMUS對幾種市售和常用的培養物和底物系統上培養hPSCs的轉染效率。

結果與討論

1.jetOPTIMUS®確保原代間充質干細胞在多次傳代時具有高轉染效率
 

圖1：在用jetOPTIMUS®轉染eGFP質粒24小時后，通過流式細胞術分析評估轉染效率，該質粒在培養四個后續傳代的原代人間充質干細胞（hMSC）中。

2.jetOPTIMUS®在不影響小鼠胚胎干細胞生存能力的情況下實現了60%以上的轉染效率
 

圖2A：在原代mESCs中用jetOPTIMUS®轉染eGFP質粒24小時后，通過流式細胞術分析評估轉染效率。

圖2B：在原代mESCs中用jetOPTIMUS®轉染eGFP質粒24小時后，通過流式細胞術評估細胞活力。

3.jetOPTIMUS®在hiPSC中提供高達80%的轉染效率
 

圖3 A：用jetOPTIMUS®在hiPSC中轉染eGFP質粒24小時后，通過流式細胞術分析評估轉染效率。

圖3B：用eGFP質粒轉染24小時的hPSCs中的GFP表達和相應的相位圖像。

4.評估jetOPTIMUS®搭配幾種hiPSC培養基和底物的轉染效率
 

表1A：jetOPTIMUS®在用幾種商業干細胞培養基培養的hiPSC中的轉染效率從最高到最低。

表1B：jetOPTIMUS®在用幾種商業干細胞基質培養的hiPSC中的轉染效率從最高到最低。

轉染方法：

質粒pCMV_eGFP_Luc（6.4kb）編碼具有巨細胞病毒（CMV）啟動子的增強型綠色熒光蛋白（eGFP）/螢光素酶的融合蛋白，購自Clontech（#6169-1）。質粒pEF1a_eGFP（4.9kb）編碼具有延伸因子-1α（EF1a）啟動子的eGFP，購自Ezyvec（#A626.1）。pCMV_eGFP_Luc用于轉染hMSC和mES，pEF1a_eGFP用于轉染hiPSC。

轉染前72小時，將hMSCs接種在24孔板中，每孔12000個細胞，接種在500µL相應的細胞維持培養基中，并在37°C下用5%CO2孵育。對于mESCs，在轉染前24小時，將細胞以每孔20000個細胞的速度接種在500µL mES培養基中的24孔板中，并在37°C下用5%CO2孵育。對于hiPSC，在轉染前24小時，將細胞接種在涂有Corning®Matrigel®基質的24孔板中，該基質含有2 mL mTeSR培養基和10µM ROCK抑制劑，每孔10萬個細胞，并在37°C和5%CO2下孵育。

對于hMSCs和hiPCS，在轉染前30分鐘，移除培養基并用500µL的MSCBM代替™，不添加補充物，或分別用500µL含有10µM ROCK抑制劑的hiPSCs培養基，將培養板放回培養箱。