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多重熒光免疫組化實驗相關技術問答(三)

瀏覽次數:799 發布日期:2023-5-9  來源:absin

Q1:我該如何得到完美的多色結果呢?

A1:首先,您需要有質量不錯的樣本和抗體,這就已經是成功的一半(樣本、抗體選擇攻略),對于樣本來說,脫片是我們需要預防的“頭號公敵”,多色實驗需要重復熱修復洗脫抗體多次,假如片子脫片,輕則成像模糊,重則組織脫落前功盡棄,可以在開始實驗之前先模擬幾輪熱修復,不加抗體和其他試劑,看看組織是否有脫落的跡象,如果脫落比較嚴重,則需要重新制備切片,如果有輕微脫片,則可以考慮購買抗體洗脫液,替代熱修復的過程;然后,就可以開始做實驗了,我們建議您先進行抗體和染料工作條件摸索,再上多染(參考下圖流程),這樣多染的成功率可以達到90%以上哦!(小愛經驗之談,即便是染了千百遍的常見指標,換個樣本,染色效果就可能天差地別,有條件還是建議要做預實驗。)
 


最后的10%,就需要調整指標與染料搭配以及染色的順序了。

 

Q2:有沒有推薦的染料搭配和染色順序呢?
 

A2:染料搭配一般遵循“寡靶配強光,眾靶配弱光”的原則,意思是表達比較弱的指標搭配熒光信號比較強的染料,表達相對強的指標搭配信號比較弱的染料,Absin的TSA染料波長越短熒光強度越強,比如說需要染PD-1,CD8和CD3,我們手里有一個四色試劑盒(TSA520/TSA570/TSA650),通過IHC發現樣本中PD-1的信號很少,CD3信號非常多,其次是CD8,于是選擇TSA520搭配PD-1,TSA650搭配CD3,TSA570搭配CD8,比較合理。
 

接下來就是怎么安排染色先后順序

1)劃分細胞定位,先外后內:確定每個指標的細胞定位,膜表達先染,胞漿或者胞核的后染(如果是指標比較多的情況下,胞內指標排在比較后面,經過前期多輪洗脫,可以不做細胞通透;如果指標很少,染胞內指標之前還是需要打孔,多個胞內指標也只需要打一次孔);
2)確定抗原修復方式,先酸后堿:堿修復比酸修復的力度會更強,個別抗體在用堿修復以后會染出來很多非特異性,所以如果是相同的細胞定位,就先染酸修復,再染堿修復的抗體;
3)根據IHC結果判別,先弱后強:組化結果顯示指標比較少,比較弱的,排在前面染,理論上來說越靠前染的指標效果會越接近單標染色。
 

以上就是一些通用規則,但不同的指標還是可能出現變化,要想得到最完美的結果,就需要不同的排列組合一個一個嘗試(如下表,“X”代表有信號),這樣會比較耗費時間和試劑,您可以根據通用規則先行一次多染,然后各通道跟熒光單染做對比,如果效果差別很大,那就再調整染色順序,如果單染的結果跟組化差別比較大(出現高背景,非特異性明顯),就要考慮更換染料搭配。
 

Target Best Signal Recommended
Dilution
1st AR 3rd AR 6th AR
FOXP3     x 1:250
PD-1 x     1:250
LAG3   x x 1:250
CD4   x x 1:250


Q3:我成像完了以后想要做數據分析,你們有什么軟件推薦嗎?
 

A3:目前市面上數據分析軟件還是比較多的,像免費的您可以下載imageJ、Qupath,缺點就是用法都需要您自行摸索;我們公司安裝的是HALO和StrataQuest兩款軟件,HALO是付費的,StrataQuest是我們TG的掃描儀平臺自帶的,從功能、分析的精準度和可操作性來說,肯定是大大優于開源軟件的,且有軟件專業的技術支持團隊能夠答疑解惑。您可以根據您的實際情況選擇合適的分析軟件,如果您實在無從下手,也可以找Absin,我們可以提供數據分析的服務~

發布者:愛必信(上海)生物科技有限公司
聯系電話:021-38015121
E-mail:info@absin.cn

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