背景
膜蛋白是生物膜功能的主要執行者,在生物體內參與許多重要的生理過程。但是,由于很難獲得穩定均勻且維持膜蛋白正確構象的膜模擬環境,膜蛋白研究遠遠滯后于水溶性蛋白。磷脂納米盤(Nanodisc)是由高密度脂蛋白發展而來的用于膜蛋白研究的新類型膜結構。將膜蛋白與Nanodisc組裝起來,是膜蛋白研究的有效方法。制備納米盤的一種常用方法是將苯乙烯-馬來酸(SMA)添加到完整的細胞膜上,從而自發地生成SMA-脂質顆粒(SMALP)的納米盤1。
微流體擴散分級(MDS)使用微流控分析芯片將蛋白質樣本送入一個通道,在這個通道中,蛋白質樣本與輔助流體一起以穩定的層流狀態流動,沒有混合。蛋白質從一個流層轉移到另一個流層的唯一途徑是擴散,擴散的速率與蛋白質的大小流體動力學半徑Rh成正比。Rh的改變表明分子結合事件的發生。
摘要
在本應用中采用MDS技術的Fluidity one-W檢測到了SMALP納米盤的形成,而且揭示了SMA與脂質體的比例是如何影響SMALP納米盤的大小,這是表征嵌入膜蛋白的一個關鍵參數。
低SMA/脂質體比例下,SMALP納米盤開始形成。隨著SMA/脂質體比例的升高,單層囊泡開始降解,大的異質性SMALP逐漸形成。在更高的SMA/脂質體比例下,SMALPs的平均流體動力學半徑(Rh)縮小了4.5倍,這使得其內嵌的脂質大大減少了。
納米盤這種大小變化極大地改變了內嵌膜蛋白周圍的環境,因此在生物物理和生化應用中需要加以考慮。
因此,對于研究或使用SMALPs,以根據實驗需求調整SMALP大小的研究人員來說,Fluidity one-W是一個理想的工具。
方法
1.制備熒光標記的脂囊泡
1-棕櫚酰基-2-油酰-SN-甘油-3-磷酰膽堿(POPC)和1-棕櫚酰-2-(二吡啶甲基硼二氟)十一烷基酰-SN-甘油-3-磷酸膽堿(TopFluor® PC; both Avanti Polar Lipids)混合,得到1 mol% 的TopFluor PC。
氯仿蒸發,脂質膜干燥過夜,加入PBS緩沖(pH值7.4),得到總脂質濃度10mM。10 mM脂質(POPC / TopFluor PC 1 mol%)穿過孔隙大小100 nm的聚碳酸酯膜30次,得到熒光標記大單層囊泡(LUVs)。
通過動態光散射分析得到的熒光標記LUVs,其z-平均流體動力學直徑為118±7 nm,多分散性指數為0.2±0.08。
2.制備SMALP納米盤
PBS (pH7.4)稀釋苯乙烯-馬來酸(SMA 3:1)共聚物原液。為分析納米盤的形成,將LUVs與SMA以不同比例混合,在21℃溫度下孵育至少2小時。Fluidity One-W檢測樣品。
結果
在微流控芯片上,當樣品通過芯片時,記錄未擴散樣品(Fundiffused)和擴散樣品(Fdiffused)的熒光強度。
沒有加入SMA時,完整LUVs的熒光信號比(SR),SR=Fdiffused/Fundiffused,為~0.15,為低擴散水平。
相比之下,在SMA存在的情況下,熒光SR值為0.75,表明大的LUV轉化為小得多的微小納米盤,引起了更高水平的擴散。
為了分析SMA與脂質的比例如何影響SMALP納米盤的大小,不同濃度(25 µM, 50 µM 和100 µM)的熒光標記LUVs與SMA混合。
當SMA/脂質≥0.08時,SR的增加表明SMA從LUVs中提取脂質,形成小顆粒物,與完整的LUVs共存。
SMA /脂質= 0.15時, LUV完全溶液化2。根據Fluidity one-W檢測結果,SMA /脂質= 0.15時, SMALP納米盤平均Rh是20 nm;隨著SMA比例的提高,最小Rh為4.5 nm 。
根據測量的Rh值,確定了納米盤的半徑(Rdisc) 3。假設POPC-雙分子層厚度為4 nm4,那么Rh值為20 nm和4.5 nm時,Rdisc值分別為26 nm和5 nm。
這種Rdisc的變化可直接轉化為嵌入的脂質的數量。
結論
Fluidity one-W利用MDS技術,直接在溶液中檢測分子結合事件,是一種通過微量樣品檢測SMALP納米盤形成的理想工具。SMALP納米盤的平均流體動力學半徑根據SMA/脂質比例不同從20 nm到4.5 nm不等。這種大小的變化將顯著改變任何嵌入蛋白周圍的脂質環境,因此在納米盤研究中至關重要。
采用微流控擴散(MDS)技術的Fluidity one-W是一款非常實用的分子互作儀。研究人員可以在溶液中以及在復雜的生物學背景(例如粗裂解液或血漿中)研究蛋白質相互作用。還可以分析難以研究的蛋白質(例如膜蛋白質,多蛋白質復合物和固有紊亂的蛋白質)的相互作用,其中許多蛋白質都是重要的藥物靶標。此外,由于它報告了結合和未結合物質的絕對大小,因此可以與結合親和力同時評估化學計量和結合性質,從而全面了解結合事件。
//親和力檢測
//蛋白穩定性檢測
//化學計量參數檢測
//直接檢測血清中抗體濃度和親和力
//膜蛋白分子互作最佳檢測方法
//在溶液中直接檢測,更接近天然狀態
//非表面結合原理,無需擔心非特異性結合
//兼容細胞裂解液、培養基、血清等復雜的溶液背景
參考文獻
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