一、什么是CelCradle生物反應器

CelCradle生物反應器根據(jù)潮汐漲落原理設計而成，其中波紋管的壓縮和解壓可使細胞不斷接觸培養(yǎng)基的營養(yǎng)與空氣，提供了一個低細胞撕裂、無泡沫、高氧氣飽和度以及高營養(yǎng)濃度的細胞培養(yǎng)環(huán)境。

CelCradle是用于高密度細胞培養(yǎng)的一款易于使用的經(jīng)濟型臺式生物反應器，既可以高密度培養(yǎng)細胞，也可以收集細胞分泌產(chǎn)物。

二、CelCradle潮汐式工作原理

通過CelCradle細胞培養(yǎng)瓶底部的波紋管壓縮和解壓，細胞間歇的暴露在空氣和培養(yǎng)基中，使細胞充分與培養(yǎng)基和氧氣接觸，和滾瓶的原理類似。

三、CelCradle生物反應器產(chǎn)品特點

•大面積高密度貼壁細胞培養(yǎng)空間

•預先滅菌、隨時可用

•一次性使用CelCradle培養(yǎng)瓶，操作簡單

•低剪切力、低細胞撕裂、無泡沫以及無氧氣限制高營養(yǎng)的細胞培養(yǎng)環(huán)境

•兼容大多數(shù)無血清培養(yǎng)基

•全細胞、細胞組分或細胞產(chǎn)物的培養(yǎng)和采集功能

四、為什么選擇CelCradle生物反應器

1. 簡便易用的設計，一次性使用可以節(jié)約空間和人力資源

CelCradle生物反應器是一款隨時可用的一次性生物反應系統(tǒng)，無需啟動時間及復雜的學習過程.

CelCradle生物反應器可放置在6立方英尺CO₂培養(yǎng)箱內(nèi)，并且可同時運行4個細胞培養(yǎng)瓶。 一個標準CelCradle細胞培養(yǎng)瓶帶有5.5g BioNoc II載體，可提供15000平方厘米的細胞培養(yǎng)總面積，培養(yǎng)細胞數(shù)可達到4~5 x 10⁹/瓶，相當于18至20個滾動式細胞培養(yǎng)瓶的培養(yǎng)量。

可以通過增加CelCradle培養(yǎng)瓶數(shù)或者使用同為潮汐原理的TideCell生物反應器實現(xiàn)細胞規(guī)模的擴大化生產(chǎn)，從而簡化了培養(yǎng)系統(tǒng)規(guī)模擴大的過程以及節(jié)省了開發(fā)過程中所需的支出。

2. 高細胞產(chǎn)量，特殊的B_H功能促進蛋白表達

一臺CelCradle生物反應器可取代數(shù)百個培養(yǎng)皿、傳統(tǒng)細胞培養(yǎng)瓶以及多組細胞培養(yǎng)滾瓶等等，從而大大縮減生產(chǎn)成本。

該系統(tǒng)不僅可實現(xiàn)較高的細胞產(chǎn)量，且這種特殊的B_H功能（增加底部保持時間）不僅限制了細胞的過度生長而且增加了超過3倍的蛋白表達，同時還可實現(xiàn)更高的蛋白濃度并在培養(yǎng)過程中節(jié)省培養(yǎng)基。

五、應用領域

•哺乳動物和昆蟲細胞培養(yǎng)

•蛋白質和病毒生產(chǎn)

•單克隆抗體生產(chǎn)

•蛋白質組研究

•藥物研發(fā)

•藥物代謝動力學研究

•基因和細胞治療研究

專業(yè)論文支持

以下是一些現(xiàn)有支持CelCradle細胞培養(yǎng)系統(tǒng)的科學研究應用的學術論文

[1]Akiyama, M., Nakayama, D., Takeda, S., Kokame, K., Takagi, J., & Miyata, T. (n.d.). Crystal structure and enzymatic activity of an ADAMTS-13 mutant with the East Asian-specific P475S polymorphism. J Thromb Haemost Journal of Thrombosis and Haemostasis, 1399-1406.

[2]Asaoka, Y., Tanaka, T., Tsumoto, K., Tomita, M., & Ide, T. (n.d.). Efficient expression of recombinant soluble human FcγRI in mammalian cells and its characterization. Protein Expression and Purification, 155-161.

[3]Brown, A., Mcsharry, J., Adams, J., Kulawy, R., Barnard, R., Newhard, W., . . . Drusano, G. (2011). Pharmacodynamic Analysis of a Serine Protease Inhibitor, MK-4519, against Hepatitis C Virus Using a Novel In Vitro Pharmacodynamic System. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 1170-1181.

[4]Chen, Y., Wu, J., Wang, K., Chiang, Y., Lai, C., Chung, Y., & Hu, Y. (n.d.). Baculovirus-mediated production of HDV-like particles in BHK cells using a novel oscillating bioreactor. Journal of Biotechnology, 135-147.

[5]Drugmand, J., J.-F., J., Agathos, S., & Schneider, Y. (n.d.). Growth of Mammalian and Lepidopteran Cells on BioNOC^® II Disks, a Novel Macroporous Microcarrier. Cell Technology for Cell Products, 781-784.

[6]Hammonds, J., Chen, X., Zhang, X., Lee, F., & Spearman, P. (n.d.). Advances in methods for the production, purification, and characterization of HIV-1 Gag–Env pseudovirion vaccines. Vaccine, 8036-8048.

[7]Haredy, A., Takenaka, N., Yamada, H., Sakoda, Y., Okamatsu, M., Yamamoto, N., . . . Okamoto, S. (2013). An MDCK Cell Culture-Derived Formalin-Inactivated Influenza Virus Whole-Virion Vaccine from an Influenza Virus Library Confers Cross-Protective Immunity by Intranasal Administration in Mice. Clinical and Vaccine Immunology, 998-1007.

[8]Haredy, A., Yamada, H., Sakoda, Y., Okamatsu, M., Yamamoto, N., Omasa, T., . . . Yamanishi, K. (2014). Neuraminidase gene homology contributes to the protective activity of influenza vaccines prepared from the influenza virus library. Journal of General Virology, 2365-2371.

[9]Ho, L., Greene, C., Schmidt, A., & Huang, L. (n.d.). Cultivation of HEK 293 cell line and production of a member of the superfamily of G-protein coupled receptors for drug discovery applications using a highly efficient novel bioreactor. Cytotechnology, 117-123.

[10]Hu, Y., Lu, J., & Chung, Y. (n.d.). High-density cultivation of insect cells and production of recombinant baculovirus using a novel oscillating bioreactor. Cytotechnology, 145-153.

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