1 . 膠體金試紙條背景深或者是金殘留跑不動(dòng)？

原因之一：被標(biāo)記蛋白復(fù)溶液中添加的某種成分不合適。

解決方法：修改復(fù)溶液配方。

2. 膠體金試紙條邊緣效應(yīng)如何去除？

原因之一：金爬速過(guò)快或者過(guò)慢。

解決方法：對(duì)樣品墊進(jìn)行處理。

3. 膠體金標(biāo)記蛋白時(shí)出現(xiàn)死金如何解決？或者是金標(biāo)記不上？

原因之一：被標(biāo)記蛋白量不足。

解決方法：重新篩選合適的蛋白標(biāo)記量。

4. 熬制膠體金時(shí)出現(xiàn)顏色不正常怎么辦？

原因之一：容器不干凈或者使用的水質(zhì)有雜質(zhì)。

解決方法：容器一定保證干凈，更換無(wú)雜質(zhì)的蒸餾水。

5.膠體金標(biāo)記蛋白時(shí)顏色變淺？

原因之一：被標(biāo)記蛋白液中含有過(guò)高的鹽離子。

解決方法：被標(biāo)記蛋白液需要更換蒸餾水透析后使用。

6. 膠體金試紙條假陽(yáng)性問(wèn)題怎么解決？

原因之一：被測(cè)樣本雜質(zhì)多，干擾大。

解決方法：根據(jù)實(shí)測(cè)樣本背景情況提高T線深度。

原因之一：干燥過(guò)程濕度大，溫度高，時(shí)間長(zhǎng)。

解決方法：控制干燥過(guò)程的溫濕度，并且金條干燥時(shí)間不得超過(guò)5小時(shí)。

8. 怎樣提高膠體金試紙條的靈敏度？

原因之一：使用了不配對(duì)的抗原。

解決方法：篩選配對(duì)抗原。

9. 試紙條T線隨著時(shí)間延長(zhǎng)顏色變淺？有時(shí)變深，如何解釋？

原因之一：金跑速快時(shí)，抗原抗體結(jié)合不牢固，顏色變淺；金跑速慢時(shí)，抗原抗

體結(jié)合牢固，顏色變深。

解決方法：選擇合適的樣品墊，控制好爬速5-10min。

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