為更好地服務客戶，上海澤泉科技股份有限公司特邀德國WALZ資深光合熒光技術專家Gert Schansker博士，2019年11月將分別在上海、泰安、北京、沈陽等地舉辦系列巡回學術報告。

澤泉科技誠摯您參加本次活動，交流光合熒光研究領域內的最新技術，期待您的光臨。

報告主題：葉綠素a熒光，PC、P700與Fd氧還狀態同步測量技術在植物抗逆，PSI與PSII間的互作，流經與環繞PSI的電子傳遞等研究中的應用（Application of simultaneous measurements of Chl a fluorescence and the redox states of PC, P700 and Fd to the study of the interaction between PS II and PS I, the electron flow through and around PS I as well as the screening for stress tolerance）

報告人：

Gert Schansker博士

報告時間與地點：
• 中科院上海植物生理生態研究所
2019年11月4日（周一） 下午13:30
地址：上海市徐匯區楓林路300號中科院上海植生所1號樓113報告廳
• 山東農業大學
2019年11月6日（周三） 上午9:00
地址：山東省泰安市岱宗大街61號山東農業大學國重樓534報告廳
• 中科院北京植物研究所
2019年11月7日（周四） 下午15:10 – 16:40
地址：北京市香山南辛村20號中科院北京植物研究所景天樓303報告廳
• 沈陽農業大學
2019年11月11日（周一） 上午9：00
地址：沈陽市東陵路120號沈陽農業大學園藝學院326報告廳

報告摘要
作為PSI的電子供體和電子受體，PC（質體藍素）和Fd（鐵氧還蛋白）對PSI的氧化還原起著至關重要的調控作用。但一直缺乏科學便捷的手段對其運轉狀態進行檢測。集成以DUAL-PAM-100為標志的第二代PAM的基本功能，采用先進的解卷積技術（一種根據來源不同對信號進行分離的技術），WALZ公司推出了可以測量PC和Fd氧化還原狀態的新一代PAM熒光儀—DUAL-KLAS-NIR四通道動態LED陣列近紅外光譜儀。新設備能夠測量4組不同波段（780-820nm，820-870nm，840-965nm，870-965nm）的信號，實現對P700（PSI反應中心）、PC和Fd的氧化還原狀態分別測量。另外，它還可以測量由540nm和460nm光化光激發的葉綠素熒光，了解葉片深層熒光信息。
利用DUAL-KLAS-NIR四通道動態LED陣列近紅外光譜儀，可以準同步地測量各種不同的信號，不僅在馳豫動力下，還可持續地在自然穩態下同時獲取各組分的信息。可獲取Fd和PC庫相對于P700的大小及不同條件下各組分氧化還原的比例，了解依賴類囊體腔內質子釋放和ATP合酶的消耗之間平衡的光合控制過程等，在植物抗逆生理，光合突變體鑒定、PSI與PSII間的互作，流經與環繞PSI的電子傳遞等光合機理與生理生態研究中均有廣泛的應用。

參會聯系方式
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專家簡介
Gert Schansker博士畢業于荷蘭瓦赫寧根大學，獲得植物生理學和生物物理學博士學位。主要研究方向為光合機構的光脅迫反應，提出光系統II受體側碳酸氫鹽的不可逆損失是光系統II活性降低的主要發生機制。他在研究中應用的主要非侵入性技術之一是葉綠素a熒光與光聲信號的同步測量技術。之后在歐盟的資助下，前往希臘雅典Demokritos研究所從事博士后研究，使用EPR技術研究一氧化氮（NO）與光系統II錳簇S態的相互作用。他利用一系列單周轉飽和閃光及葉綠素熒光Fo信號與S態相關的周期-4振幅研究了S態與S態衰變對NO的響應，闡明了實驗中觀測到的NO誘導的多線態EPR信號可能就是S-2態的表征。后來在瑞士日內瓦Reto Strasser博士的實驗室工作期間，研究了光暗轉換過程中820 nm吸收信號與葉綠素a熒光動力學之間的關系，系統研究了多種植物在各種脅迫條件下的快速葉綠素熒光誘導動力學曲線（O-I1-I2-P或O-J-I-P瞬變），為此類測量提供了幾乎完整的描述。在匈牙利結束了光適應和一種蝦青素過量導致煙草突變的研究之后，自2018年開始，Gert Schansker博士作為德國WALZ公司的應用科學家，負責Multi-Color-PAM和Dual-KLAS-NIR相關理論和應用的研究工作。

報告人近年發表的文章
1. Schansker G, Tóth S Z, Holzwarth A R, et al. Chlorophyll a fluorescence: beyond the limits of the Q A model[J]. Photosynthesis research, 2014, 120(1-2): 43-58.
2. Schansker G, Tóth S Z, Kovács L, et al. Evidence for a fluorescence yield change driven by a light-induced conformational change within photosystem II during the fast chlorophyll a fluorescence rise[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 2011, 1807(9): 1032-1043.
3. Schansker G, Yuan Y, Strasser R J. Chl a fluorescence and 820 nm transmission changes occurring during a dark-to-light transition in pine needles and pea leaves: a comparison[M]//Photosynthesis. Energy from the Sun. Springer, Dordrecht, 2008: 945-949.
4. Schansker G, Tóth S Z, Strasser R J. Dark recovery of the Chl a fluorescence transient (OJIP) after light adaptation: the qT-component of non-photochemical quenching is related to an activated photosystem I acceptor side[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 2006, 1757(7): 787-797.
5. Schansker G, Tóth S Z, Strasser R J. Methylviologen and dibromothymoquinone treatments of pea leaves reveal the role of photosystem I in the Chl a fluorescence rise OJIP[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 2005, 1706(3): 250-261.
6. Schansker G, Strasser R J. Quantification of non-Q B-reducing centers in leaves using a far-red pre-illumination[J]. Photosynthesis research, 2005, 84(1-3): 145-151.
7. Schansker G, Srivastava A, Strasser R J. Characterization of the 820-nm transmission signal paralleling the chlorophyll a fluorescence rise (OJIP) in pea leaves[J]. Functional Plant Biology, 2003, 30(7): 785-796.
8. Schansker G, Goussias C, Petrouleas V, et al. Reduction of the Mn cluster of the water-oxidizing enzyme by nitric oxide: formation of an S-2 state[J]. Biochemistry, 2002, 41(9): 3057-3064.
9. Schansker G, Van Rensen J J S. Performance of active photosystem II centers in photoinhibited pea leaves[J]. Photosynthesis Research, 1999, 62(2): 175-184.